Оценка эффективности OPU/IVP технологии у голштинской породы крупного рогатого скота: влияние частоты и длительности использования телок-доноров

Результативность получения эмбрионов in vitro (in vitro embryo production, IVP) с использованием донорских ооцитов во многом зависит от условий выполнения трансвагинальной пункции фолликулов (ovum-pick-up, OPU). Цель исследования состояла в определении влияния частоты и длительности использования доноров на результативность OPU, а также компетенцию выделенных OPU-ооцитов к эмбриональному развитию в условиях in vitro у телок голштинской породы КРС. OPU выполняли в режиме 1 (1w, n=5) и 2 (2w, n=5) раза в неделю. Всего было проведено соответственно 10 и 20 последовательных сеансов OPU с разделением на периоды. В рамках режима 1w выделяли 2 периода (OPU1-5 и OPU6-10), в рамках 2w – 4 периода (OPU1-5; OPU6-10; OPU11-15 и OPU16-20). Увеличение кратности OPU с 1 до 2 раз в неделю (в масштабе всего экспериментального периода) повысило количество аспированных фолликулов (7,97 против 6,32, р<0,05) и выделенных из них ооцитов (4,87 против 3,70, р<0,05) в расчете на одну сессию, но ухудшило полноценность ооцитов с точки зрения их способности к эмбриональному развитию in vitro. В режиме 1w созревание OPU-ооцитов отмечали в 90,9±2,46 % случаев, дробление – 79,2±4,13 %, развитие до стадии бластоцисты – 41,4±5,64 %. С увеличением интенсивности проведения OPU величины этих показателей снижались соответственно до 83,4±2,54 (р<0,05), 50,8±3,18 (р<0,001) и 15,4±2,19 % (р<0,001). При частоте OPU 1 раз в неделю показатели результативности OPU/IVP по периодам существенно не изменялись. Выполнение сеансов дважды в неделю приводило к постепенному снижению количества УЗИ-видимых фолликулов и выделенных ооцитов, которое достигало минимальных в опыте значений с 16-го по 20-й сеанс OPU. Таким образом, при продолжительном использовании телок голштинской породы процедуру OPU не следует проводить чаще 1 раза в неделю.

1. Impacts of climate change on the livestock food supply chain; a review of the evidence / C. M. Godde, D. Mason-D’Croz, D. E. Mayberry, et al. // Glob. Food. Sec. 2021. Vol. 28. Article 100488. URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S2211912420301413 (дата обращения: 15.05.2025). doi: 10.1016/j.gfs.2020.100488.

2. Animal genetic resources: Developing the research of allele pool of Russian cattle breeds — minireview / N. A. Zinovieva, A. A. Sermyagin, A. V. Dotsev, et al. // Sel’skokhozyaistvennaya Biologiya [Agricultural Biology]. 2019. Vol. 54. No. 4. P. 631–641. doi: 10.15389/agrobiology.2019.4.631eng.

3. Повышение конкурентоспособности крупного рогатого скота голштинской породы в Московском регионе / А. Н. Ермилов, Т. В. Богданова, А. А. Ермилов и др. // Генетика и разведение животных. 2024. № 2. С. 89–97. doi: 10.31043/2410-2733-2024-2-89-97.

4. In vitro and in vivo embryo production efficiency in Flemish and Holstein donor females / F. C. Zago, L. F. Schutz, R. P. D. C. Gerger, et al. // Anim. Reprod. 2023. Vol. 20. No. 3. Article e20230080. URL: https://www.scielo.br/j/ar/a/7BWCYhKfbZRRYQSMCcrDbBf/?lang=en (дата обращения: 15.05.2025). doi: 10.1590/1984-3143-AR2023-0080.

5. Mapletoft R. J. History and perspectives on bovine embryo transfer // Animal Reproduction. 2013. Vol. 10. No. 3. P. 168–173.

6. No difference in health and fertility characteristics between offspring arising from in vitro production or multiple ovulation embryo transfer / E. Mullaart, G. Ludema, A. Zijlstra, et al. // Reprod. Fertil. Dev. 2021. Vol. 34. No. 2. P. 267–268. doi: 10.1071/RDv34n2Ab64.

7. Review: Recent advances in bovine in vitro embryo production: reproductive biotechnology history and methods / L. B. Ferre, M. E. Kjelland, L. B. Strobech, et al. // Animal. 2020. Vol. 14. No. 5. P. 991–1004. doi: 10.1017/S1751731119002775.

8. Viana J. IETS 2017 Statistics of embryo production and transfer in domestic farm animals // Embryo Technology Newsletter. 2018. Vol. 36. No. 4. P. 8–25.

9. Viana J. IETS 2023 Statistics of embryo production and transfer in domestic farm animals // Embryo Technology Newsletter. 2024. Vol. 43. No. 4. P. 31–46.

10. Hansen P. J. Review: Some challenges and unrealized opportunities toward widespread use of the in vitro-produced embryo in cattle production / P. J. Hansen // Animal. 2023. Vol. 17. Suppl 1. Article 100745. URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1751731123000411?via%3Dihub (дата обращения: 15.05.2025). doi: 10.1016/j.animal.2023.100745.

11. Krisher R. L., Herrick J. R. Bovine embryo production in vitro: Evolution of culture media and commercial perspectives // Animal Reproduction. 2024. Vol. 21. No. 3. Article e20240051. URL: https://www.scielo.br/j/ar/a/NLcwdgr7B4yHmdKDpCTKMGv/?lang=en (дата обращения: 15.05.2025). doi: 10.1590/1984-3143-AR2024-0051.

12. Factors that interfere with oocyte quality for in vitro production of cattle embryos: Effects of different developmental & reproductive stages / P. S. Baruselli, E. O. S. Batista, L. M. Vieira, et al. // Animal Reproducton. 2016. Vol. 13. No. 3. P. 264–272. doi: 10.21451/1984-3143-AR861.

13. Effect of OPU session periods on the efficiency of in vitro embryo production in elite Korean native cow / B.-H. Choi, S.-H. Song, B.-Y. Park, et al. // Journal of Embryo Transfer. 2018. Vol. 33. No. 4. P. 265–270. doi: 10.12750/JET.2018.33.4.265.

14. Efficacy of repeated ovum pick-up in Podolic cattle for preservation strategies: A pilot study / G. A. Presicce, G. Neglia, A. Salzano, et al. // Italian Journal of Animal Science. 2020. Vol. 19. No. 1. P. 31–40. doi: 10.1080/1828051X.2019.1684213.

15. Чинаров Р. Ю., Луканина В. А., Сингина Г. Н. Результативность прижизненного получения ооцитов у коров тагильской породы // Ветеринария и кормление. 2024. № 1. С. 89–94. doi: 10.30917/ATT-VK-1814-9588-2024-1-19.

16. Сингина Г. Н., Чинаров Р. Ю., Шедова Е. Н. Влияние количества повторяющихся процедур OPU на эффективность получения in vitro эмбрионов у ярославской породы крупного рогатого скота // Достижения науки и техники АПК. 2023. Т. 37. № 11. С. 59–64. doi: 10.53859/02352451_2023_37_11_59.

17. The interval between the emergence of pharmacologically synchronized ovarian follicular waves and ovum pickup does not significantly affect in vitro embryo production in Bos indicus, Bos taurus, and Bubalus bubalis / L. U. Gimenes, M. L. Ferraz, P. Fantinato-Neto, et al. // Theriogenology. 2015. Vol. 83. P. 385–393. doi: 10.1016/j.theriogenology.2014.09.030.

18. Wrenzycki C., Stinshoff H. Maturation environment and impact on subsequent developmental competence of bovine oocytes // Reproduction in Domestic Animals. 2013. Vol. 48. No. 1. P. 38–43. doi: 10.1111/rda.12204.

19. Оценка эффективности OPU/IVP технологии у истобенской породы крупного рогатого скота / Г. Н. Сингина, Р. Ю. Чинаров, Е. Н. Шедова и др. // Достижения науки и техники АПК. 2024. Т. 38. № 12. С. 47–53.

20. Effects of donors and in vivo ovum pick-up conditions on in vitro embryo development in Korean native cow / Y. S. Park, J. H. Kong, J. K. Yi, et al. // Korean Journal of Veterinary Service. 2021. Vol. 44. No. 4. P. 227–237. doi: 10.7853/kjvs.2021.44.4.227.