Влияние полиморфизмов гена SLCO2B1 на живую массу у овец породы манычский меринос

Исследования проводили с целью оценки ассоциации полиморфизмов гена SLCO2B1 с живой массой у баранов породы манычский меринос. Генотипирование выполняли методом полногеномного секвенирования (NovaSeq 6000) 30 клинически здоровых девятимесячных баранов, отобранных случайным образом из трёх неродственных линий (коэффициент родства ≤0,5). Картирование на референсный геном ARS-UI_Ramb_v2.0 осуществляли в Ugene Unipro v.47.0. Полиморфизмы в гене SLCO2B1 (15: 53 098 859–53 149 487) и флангах (±500 п.н.) фильтровали по глубине ≥50× и качеству генотипа ≥30. Статистический анализ проводили после проверки нормальности (критерий Шапиро-Уилка) с использованием t-критерия Стьюдента. Выявлено 468 полиморфизмов (424 SNP). После фильтрации по частоте (≥13 %) и проверки ассоциации с живой массой отобрано 16 локусов (все интронные). Для SNP 53123291 носители мутантного аллеля превосходили референсные гомозиготы на 23 % (53,73±1,80 кг против 43,69±1,56 кг; p<0,05). Для SNP 53118588 разница составила +20,54 % (57,57±2,54 кг против 47,76±1,60 кг; p<0,05). Наибольшая средняя живая масса среди всех групп зафиксирована у носителей мутантного аллеля 53118588 (57,57 кг). Для SNP 53117725 референсные гомозиготы достоверно превосходили носителей мутантного аллеля на 14,78 % (51,58±1,77 кг против 43,95±1,44 кг; p<0,05). Частота мутантного аллеля для SNP 53123291 составила 0,37, доля особей с мутантным аллелем – 63 %. Таким образом, полиморфизмы 53123291 и 53118588 ассоциированы с достоверно более высокой живой массой, 53117725 – с более низкой. Для понимания функциональной значимости выявленных ассоциаций необходимы дальнейшие исследования молекулярных механизмов влияния этих полиморфизмов на хозяйственно-полезные признаки фенотипа.

1. Polymorphism of genes and their impact on beef quality / P. Kostusiak, J. Slosarz, M. Golebiewski, et al. // Current Issues in Molecular Biology. 2023. Vol. 45. P. 4749–4762. doi: 10.3390/cimb45060302.

2. Whole-genome resequencing of Hu sheep identifies candidate genes associated with agronomic traits / L. Zhao, L. Yuan, F. Li, et al. // Journal of Genetics and Genomics. 2024. Vol. 51. No. 8. URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S1673852724000687?via%3Dihub (дата обращения: 11.03.2026). doi: 10.1016/j.jgg.2024.03.015.

3. Fine mapping genetic variants affecting birth weight in sheep: a GWAS of 3007 individuals using low-coverage whole genome sequencing / R. Li, Y. Bai, M. Zhao, et al. // Journal of Animal Science and Biotechnology. 2025. Vol. 16. Article 115. URL: https://link.springer.com/article/10.1186/s40104-025-01251-4 (дата обращения: 11.03.2026). doi: 10.1186/s40104-025-01251-4.

4. Association of Growth Hormone (GH) Gene Polymorphism with Biological Features in Sheep in Conditions of Sustainable Development of the Agricultural System / O. N. Onishchenko, V. S. Skripkin, E. N. Chernobai, et al. // International Conference on Innovations in Sustainable Agricultural Systems. Cham: Springer Nature Switzerland, 2024. С. 468–477.

5. Prihandini P. W., Hariyono D. N., Tribudi Y. A. Myostatin gene as a genetic marker for growth and carcass traits in beef cattle // Indonesian Bulletin of Animal and Veterinary Sciences. 2021. Vol. 31. No. 1. P. 37–42. doi: 10.14334/wartazoa.v31i1.2530.

6. Variants in myostatin and MyoD family genes are associated with meat quality traits in Santa Inês sheep / L.P.B. Sousa-Junior, A.N. Meira, H.C. Azevedo, et al. // Animal Biotechnology. 2022. Vol. 33. No. 2. P. 201–213. doi: 10.1080/10495398.2020.1781651.

7. Grochowska E., Borys B., Mroczkowski S. Effects of intronic SNPs in the myostatin gene on growth and carcass traits in colored Polish merino sheep // Genes. 2019. Vol. 11. No. 2. P. 20–38. doi: 10.3390/genes11010002.

8. A genome-wide search of meat productivity candidate genes in Russian Meat Merino breed / A. Krivoruchko, A. Surov, A. Kanibolotskaya, et al. // Animal Gene. 2023. Vol. 27. Article 200146. URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S2352406523000027 (дата обращения: 11.03.2026). doi: 10.1016/j.angen.2023.200146.

9. The Organic Anion-Transporting Peptide 2B1 Is Localized in the Basolateral Membrane of the Human Jejunum and Caco-2 Monolayers / M. Keiser, L. Kaltheuner, C. Wildberg, et al. // Journal of Pharmaceutical Sciences. 2017. Vol. 106. No. 9. P. 2657– 2663. doi: 10.1016/j.xphs.2017.04.001.

10. Differential cellular expression of organic anion transporting peptides OATP1A2 and OATP2B1 in the human retina and brain: implications for carrier-mediated transport of neuropeptides and neurosteriods in the CNS / B. Gao, S. R. Vavricka, P. J. Meier, et al. // Pflügers Archiv: European Journal of Physiology. 2015. Vol. 467. No. 7. P. 1481–1493. doi: 10.1007/s00424-014-1596-x.

11. Bednarczyk D., Boiselle C. Organic anion transporting polypeptide (OATP)-mediated transport of coproporphyrins I and III // Xenobiotica. 2016. Vol. 46. No. 5. P. 457–466. doi: 10.3109/00498254.2015.1085111.

12. Messenger RNA biomarkers of Bovine Respiratory Syncytial Virus infection in the whole blood of dairy calves / D. Johnston, B. Earley, M.S. McCabe, et al. // Scientific Reports. 2021. Vol. 11. Article 9392. URL: https://www.nature.com/articles/s41598-021-88878-1 (дата обращения: 11.03.2026). doi: 10.1038/s41598-021-88878-1.

13. Использование таргетного секвенирования для генотипирования овец породы манычский меринос / А. Ю. Криворучко, А. А. Каниболоцкая, Л. Н. Скорых и др. // Международный вестник ветеринарии. 2025. №. 4. С. 438–452.

14. Genetic variations in the Myostatin gene affecting growth traits in sheep / N. M. Osman, H. I. Shafey, M. A. Abdelhafez, et al. // Veterinary World. 2021. Vol. 14. No. 2. P. 475–482. doi: 10.14202/vetworld.2021.475-482.

15. Chorev M., Carmel L. The function of introns // Frontiers in Genetics. 2012. Vol. 3. Article 55. URL: https://www.frontiersin.org/journals/genetics/articles/10.3389/fgene.2012.00055/full (дата обращения: 18.11.2025). doi: 10.3389/fgene.2012.00055.