Исследование ассоциаций клинических показателей крови с результативностью OPU у коров локальных пород

Идентификация биомаркеров, ассоциированных с репродуктивными качествами коров – перспективный подход повышения результативности технологии прижизненного получения ооцитов (OPU). Целью исследований было изучение связи клинических показателей крови с фолликулярным паттерном, количеством и качеством получаемых ооцит-кумулюсных комплексов (ОКК) у коров двух генофондных пород для использования в качестве дополнительных критериев при отборе самок – доноров ооцитов. Работу проводили на лактирующих первотелках тагильской породы (группа I; n=4) и половозрелых телках истобенской породы (группа II, n=6) с гормонально синхронизированным половым циклом, которых подвергали девяти последовательным сеансам OPU в режиме дважды в неделю (36 и 54 сеанса OPU соответственно). У всех животных на разных стадиях полового цикла и при проведении сеансов OPU определяли содержание в цельной крови лейкоцитов (LC), эритроцитов (EC), гемоглобина (HB) и гематокрит (HC). Результаты двухфакторного дисперсионного анализа показали значимое влияние факторов «животное» и «сеанс OPU» на изменчивость большинства клинических показателей крови подопытных животных. В группе коров тагильской породы использованная модель объясняла 81,4 % изменчивости LC (p=2,5•10^-6), 74,0 % – EC (p=9,7•10^-5) и 68,1 % (p=7,8•10^-4) – HB. В группе телок истобенской породы вклад оцениваемых факторов в изменчивость составил 76,0 % для LC (p=1,1•10^-8), 86,6 % – для EC (p=2,0•10^-13), 68,0 % – для HB (p=2,0•10^-6) и 60,3 % – для HC (p=7,8•10^-5). У телок истобенской породы выявлена достоверная отрицательная корреляция между EC и числом фолликулов на каждом из яичников, а также общим числом фолликулов, что с учетом отсутствия достоверных различий в степени извлечения ОКК обуславливало большее число полученных ОКК и ОКК хорошего качества. Корреляционные связи аналогичной направленности наблюдали у тагильской породы, однако они имели характер тенденции. Результаты исследования могут быть использованы при отборе телок-доноров тагильской и истобенской пород, подвергаемых аспирации фолликулов в режиме дважды в неделю.

1. Зиновьева Н. А., Позябин С. В., Чинаров Р. Ю. Вспомогательные репродуктивные технологии: история становления и роль в развитии генетических технологий в скотоводстве (обзор) // Сельскохозяйственная биология. 2020. Т. 55. № 2. С. 225–242. doi: 10.15389/agrobiology.2020.2.225rus.

2. Чинаров Р. Ю., Луканина В. А. Производство эмбрионов крупного рогатого скота с использованием прижизненно получаемых ооцитов: мировые тренды и перспективы (обзор) // Достижения науки и техники АПК. 2023. Т. 37. № 9. C. 31–38. doi: 10.53859/02352451_2023_37_9_31.

3. Efficacy of repeated ovum pick-up in Podolic cattle for preservation strategies: a pilot study / G. A. Presicce, G. Neglia, A. Salzano, et al. // Italian Journal of Animal Science. 2020. Vol. 19. No. 1. P. 31–40. doi: 10.1080/1828051X.2019.1684213.

4. Результативность прижизненного получения ооцитов в зависимости от индивидуальных особенностей и породы телок – доноров / Р. Ю. Чинаров, В. А. Луканина, С. В. Позябин и др. // Сельскохозяйственная биология. 2022. Т. 57. № 6. С. 1188–1196. doi: 10.15389/agrobiology.2022.6.1188rus.

5. Transvaginal ultrasound-guided oocyte retrieval in cattle: State-of-the-art and its impact on the in vitro fertilization embryo production outcome / L. B. Ferre, H. Alvarez-Gallardo, S. Romo, et al. // Reproduction in Domestic Animals. 2023. Vol. 58. No. 3. P. 363–378.

6. Anti-Mullerian hormone: A predictive marker of embryo production in cattle / D. Monniaux, S. Barbey, C. Rico, et al. // Reprod Fertil Dev. 2010. Vol. 22. P. 1083–1091.

7. AMH: Could it be used as a biomarker for fertility and superovulation in domestic animals / S. Umer, S. J. Zhao, A. Sammad, et al. // Genes. 2019. Vol. 10. No. 12. Article 1009. URL: https://www.mdpi.com/2073-4425/10/12/1009 (дата обращения: 15.01.2024). doi: 10.3390/genes10121009.

8. Argov N., Arav A., Sklan D. Number of oocytes obtained from cows by OPU in early, but not late lactation increased with plasma insulin and estradiol concentrations and expression of mRNA of the FSH receptor in granulosa cells // Theriogenology. 2004. Vol. 61. No. 5. P. 947–962. doi: 10.1016/j.theriogenology.2003.07.014.

9. Multistep analysis reveals the relationship between blood indices at the time of ovum pick-up and in vitro embryo production in heifers / R. Kowsar, M. Komeili, N. Sadeghi, et al. // Theriogenology. 2021. Vol. 159. P. 153–164. doi: 10.1016/j.theriogenology.2020.10.026.

10. Roland L., Drillich M., Iwersen M. Hematology as a diagnostic tool in bovine medicine // J Vet Diagn Invest. 2014. Vol. 26. P. 592–598.

11. Hematology reference intervals for adult cows in France using the Sysmex XT-2000iV analyzer / N. Herman, C. Trumel, A. Geffre, et al. // J Vet Diagn Invest. 2018. Vol. 30. P. 678–687.

12. Ahmadi M. R., Nazifi S., Ghaisari H. R. Comparison of hormonal changes of estrous cycle with cytology of cervical mucosa and hematological parameters in dairy heifers // Comp. Clin. Path. 2006. Vol. 15. P. 94–97.

13. Comparative haematology of cows during oestrus period and non-oestrus period / Z. A. Akhoon, R. Ahmed, F. U. Peer, et al. // Vet. Pract. 2012. Vol. 13. No. 1. P. 78–79.

14. Metabolic blood profile of beef heifers during oestrous and non-oestrous states / E. M. Crane, J. C. Munro, S. L. Bourgon, et al. // Reprod Domest Anim. 2016. Vol. 51. No. 5. P. 819–826. doi: 10.1111/rda.12763.

15. Нормы потребностей молочного скота и свиней в питательных веществах: Монография / Р. В. Некрасов, А. В. Головин, Е. А. Махаев и др. М.: ВИЖ им. Л. К. Эрнста, 2018. 290 с.

16. Чинаров Р. Ю., Луканина В. А., Сингина Г. Н. Влияние различной интенсивности сессий трансвагинальной пункции фолликулов яичников на прижизненное получение ооцитов у коров // Молочное и мясное скотоводство. 2023. № 3. С. 33–37. doi: 10.33943/MMS.2023.15.29.006.

17. Оптимизация режимов проведения трансвагинальной УЗИ-ассистированной пункции фолликулов у телок ярославской породы / Р. Ю. Чинаров, Г. Н. Сингина, В. А. Луканина и др. // Достижения науки и техники АПК. 2024. Т. 38. № 1. С. 57–62. doi: 10.53859/02352451_2024_38_1_57.

18. Контроль биохимического статуса свиней и коров: руководство / И. В. Гусев, Н. В. Боголюбова, Р. А. Рыков и др. Дубровицы: ВИЖ им. Л.К. Эрнста, 2019. 40 с.

19. Монгалёв Н. П., Борисенков М. Ф. Функциональная значимость лейкоцитоза в эстральном цикле коров // Актуальные вопросы ветеринарной биологии. 2016. № 4. С. 3–8. URL: http://invetbio.spb.ru/avvb/AVVB_2016_04.pdf (дата обращения: 25.01.2024).

20. Selected hematological and biochemical of the Peranakan Ongole (PO) cattle in different stage of reproductive in Indonesian tropical environment / K. Sarmin, A. Hana, P. Astuti, et al. // IOP Conf. Series: Earth and Environmental Science. 2021. Vol. 690. Article 012038. doi: 10.1088/1755-1315/690/1/012038.

21. Changes of some haematochemical parameters in dairy cows during late gestation, post partum, lactation and dry periods / G. Piccione, V. Messina, S. Marafioti, et al. // Veterinarija Ir Zootechnika. 2012. Vol. 58. P. 59–64.

22. Haemato-chemical and immune variations in Holstein cows at different stages of lactation, parity, and age / S. B. Kim, S. H. Jung, Y. J. Do, et al. // Veterinarni medicina. 2020. Vol. 65. No. 3. P. 95–103. doi: 10.17221/110/2019-VETMED.