Технологические возможности доступных субстратов, перспективных для разведения хищных клещей в сыпучих материалах

Использование энтомофагов позволяет защищать сельскохозяйственные растения от вредных членистоногих с ограничением или полным исключением применения химических пестицидов. Хищных клещей Transeius herbarius Wain. разводят на зерновом субстрате с использованием кормового клеща Acarus siro L. Исследования проводили с целью оптимизации технологии размножения хищных клещей для применения в теплицах при защите культурных растений от паутинного клеща. Схема эксперимента предусматривала использование в качестве субстрата для размножения T. herbarius различных фракций (1, 2, 4 и 6 мм) дробленного зерна пшеницы, выращенного в севооборотах после черного или сидерального пар. Субстраты заселяли мучным клещом A. siro в норме 1000 особей в 1 см³ и одновременно выпускали хищного клеща T. herbarius – 5 самок в 1 см³. Для контроля сапрофитной микрофлоры в субстрате использовали композицию из пропионовой (60 % по объему), ортофосфорной (0,5 %) и сорбиновой (0,3 %) кислот в нормах 3,5, 4,5 и 5,5 кг/т, для сравнения применяли коммерческий препарат Микокарб. С учетом наилучшего соотношения между численностью кормовых (10541 шт./см³) и хищных (128,6 шт./см³) клещей оптимальным размером частиц зерна пшеницы при изготовлении субстрата для размножения T. herbarius следует считать 4 мм. Кроме того, в этом варианте отмечали высокую численность нимф, яиц и личинок хищника. Указанного количества кормового клеща было достаточно для формирования и поддержания оптимальной возрастной структуры популяции T. herbarius, которая открывает возможности для транспортировки субстратов с интенсивно развивающимися нимфами и личинками на отдаленные объекты. Для увеличения продолжительности использования субстрата необходимо контролировать состояние сапрофитной микрофлоры, заблаговременно применяя смесь органических кислот с нормой расхода 5,5 кг/т субстрата. В первую очередь это актуально при использовании зерна, выращенного после сидерального пара.

1. Захаренко В. А. Перспективы применения химических средств защиты растений в сельском хозяйстве (по материалам VII международной конференции «ПЕСТИЦИДЫ-16») // Агрохимия. 2017. № 4. С. 10–15.

2. Insecticide resistance management and industry: the origins and evolution of the Insecticide Resistance Action Committee (IRAC) and the mode of action classification scheme / T. C. Sparks, N. Storer, A. Porter, et al. // Pest Manag. Sci. 2021. Vol. 77. No. 6. P. 2609–2619.

3. Попов Д. А., Гринцевич А. В. Биотический потенциал Transeius montdorensis (Acari: Phytoseiidae) в условиях техноценоза // Вестник защиты растений. 2023. Т. 106. № 3. С. 146–155.

4. Особенности формирования резистентности у обыкновенного паутинного клеща Tetranychus urticae Koch к акарициду флорамайт (бифеназат) / И. Н. Яковлева, Ю. И. Мешков, Н. Н. Салобукина и др. // Сельскохозяйственная биология. 2018. Т. 53. № 5. С. 1045–1053. doi: 10.15389/agrobiology.2018.5.1045.

5. Resistance selection and biochemical mechanism of resistance against cyflumetofen in Tetranychus cinnabarinus (Boisduval) / Y. Wang, S. Zhao, L. Shi, et al. // Pestic Biochem. Physiol. 2014. Vol. 111. P. 24–30. doi: 10.1016/j.pestbp.2014.04.004.

6. The range, transmitting insects, and mitochondrial DNA polymorphism of gamasid mite Hoploseius oblongus (Mesostigmata, Blattisociidae), obligate mycobiont on bracket fungus Fomitopsis pinicola (Polyporales, Basidiomycota) / B. V. Andrianov, O. L. Makarova, I. I. Goryacheva, et al. // Russ. J. Genetics. 2022. Vol. 58. No. 9. P. 1104–1117.

7. Али Х. Г. И., Сундуков О. В., Астарханова Т. С. Токсикологическое тестирование гомозиготных и дигетерозиготных по генам резистентности к малатиону и фенпироксимайту генотипов обыкновенного паутинного клеща // Агрохимия. 2019. № 11. С. 72–76.

8. An environmentally benign way to synthesize 2-thiocyano-1,3-dicarbonyl compounds with high antifungal activity: a key role of solvent / A. S. Kirillov, E. A. Semenov, O. V. Bityukov, et al. // Organic Biomol. Chem. 2023. Vol. 21. No. 17. P. 3615–3622.

9. Identification and characterization of abamectin resistance in Tetranychus urticae Koch populations from greenhouses in Turkey / N. S. Cagatay, P. Menault, M. Riga, et al. // Crop Protect. 2018. Vol. 112. P. 112–117.

10. Ulukaya K., Recep A. Y. Determination of Spiromesifen+Abamectin, Spirodiclofen, Milbemectin resistance levels of pest Tetranychus urticae Koch (Acarina: Tetranychidae) populations in Isparta apple orchards // Journal of Tekirdag Agricultural Faculty. 2022. Vol. 19. No. 3. P. 632–643.

11. Попов Д. А., Варфоломеева Е. А., Белякова Н. А. Оптимизация применения фитосеидного клеща Transeius montdorensis на декоративных культурах // Защита и карантин растений. 2021. № 12. С. 11–14.

12. Вайнштейн Б. А. Новые виды Typhlodromus (Parasitiformes, Phytoseiidae) из Грузии // Сообщения АН Грузинской ССР. 1958. Т. 21. Вып. 2. C. 201–207.

13. Регулирование численности паутинных клещей в яблоневых садах Крыма методом «наводнения» клещей-фитосейид / Е. Б. Балыкина, Л. П. Ягодинская, Т. С. Рыбарева и др. // Земледелие. 2020. № 7. С. 30–33.

14. Оценка эффективности энтомофагов и акарифагов в системах биологической защиты яблоневого сада / И. С. Агасьева, В. Я. Исмаилов, М. В. Нефедова и др. // Достижения науки и техники АПК. 2021. Т. 35. № 2. С. 47–51.

15. Рабинович Г. Ю., Зинковская Т. С., Анциферова О. Н. Биомелиорация на осушаемых землях // Российская сельскохозяйственная наука. 2021. № 2. С. 3-8.

16. Влияние приемов биологизации и внесения минеральных удобрений на содержание активного пула органического вещества в черноземе типичном / Н. П. Масютенко, А. В. Кузнецов, М. Н. Масютенко и др. // Земледелие. 2022. № 7. С. 16-20.

17. Влияние технологии возделывания залежных земель на засоренность посевов зерновых культур и их урожайность в условиях Нижегородской области / А. В. Ивенин, В. В. Ивенин, К. В. Шубина и др. // Вестник Казанского государственного аграрного университета. 2023. Т. 18. № 4 (72). С. 18-23.

18. Ахатов А. К., Камаев И. О., Мешков Ю. И. Практическое пособие по идентификации членистоногих в теплицах. М.: Товарищество научных изданий КМК, 2023. 120 с.

19. Глинушкин А. П., Яковлева И. Н., Мешков Ю. И. Токсичность используемых в теплицах и перспективных пестицидов для хищного клеща Neoseiulus barkeri (Mesostigmata: Phytoseiidae) // Достижения науки и техники АПК. 2021. Т. 35. № 1. С. 36–42.

20. Поушкова С. В., Хачиков Э. А. Самая восточная находка трипса Pezothripsdianthi (Priesner, 1921) (Thysanoptera: Thripidae) в Европе // Кавказский энтомологический бюллетень. 2022. Т. 18. № 1. С. 79–82. doi: 10.23885/181433262022181-7982.