Биотехнологические методы ускоренного воспроизводства овец молочного направления продуктивности (обзор)

Исследование проводили с целью анализа имеющихся сведений о применении биотехнологических методов ускоренного воспроизводства овец молочного направления продуктивности для темпов генетического прогресса стада. Обобщение сведений из более чем 550 отечественных и зарубежных публикаций, отобранных по ключевым словам, связанным с репродукцией и биотехнологией овец, за период 2007–2025 гг. из баз Academia.Edu, Link.Springer, Researchgate, Frontiersin, Sciencedirect, Google Scholar, Csiro Publish, MDPI, eLibrary и Cyberleninka, позволило выявить перспективные направления дальнейших исследований. Выявлено, что искусственное осеменение, включая применение сексированного семени (6×106 клеток), может обеспечивать оплодотворяемость 65…80 % и выше при условии использования современных сред для хранения спермы, сохраняющих биологическую полноценность сперматозоидов до 9 суток. Гормональная синхронизация половых циклов с использованием интравагинальных прогестероновых имплантатов (например, CIDR – сontrolled internal drug release) демонстрирует 100 %-ный положительный реакционный ответ самок и высокую эффективность первого осеменения. Ключевой метод ускоренного воспроизводства – технология трансплантации эмбрионов (ТТЭ). Наиболее перспективным можно считать метод множественной овуляции и эмбриотрансплантации (МОЭТ) in vivo, в частности с нехирургическим трансцервикальным извлечением эмбрионов, который обеспечивает выход 7,1 эмбриона за сессию, что вдвое превышает эффективность in vitro (3,6 эмбриона). Разработаны протоколы, позволяющие раскрыть шейку матки у овец на 45 минут для нехирургической пересадки, без пагубного влияния на эмбрионы. Применение бисекции эмбрионов увеличивает число жизнеспособных эмбрионов в 1,5…2 раза. Комплексное применение вспомогательных репродуктивных технологий, включая искусственное осеменение, гормональную синхронизацию, МОЭТ in vivo с нехирургической трансцервикальной пересадкой и бисекции эмбрионов, позволит увеличить производство овечьего молока, обеспечить потребности населения, в том числе людей с аллергией к белкам коровьего молока, и повысить генетический потенциал стада.

1. Disruptive innovation in agriculture: Socio-cultural factors in technology adoption in the developing world / G. N. Curry, S. Nake, G. Koczberski, et al. // Journal of Rural Studies. 2021. Vol. 88. P. 422–431. doi: 10.1016/j.jrurstud.2021.07.022.

2. The role of knowledge, attitudes and perceptions in the uptake of agricultural and agroforestry innovations among smallholder farmers in sub-Saharan Africa / S. S. Meijer, D. Catacutan, O. C. Ajayi, et al. // International Journal of Agricultural Sustainability. 2015. Vol. 13. No. 1. P. 40–54. doi: 10.1080/14735903.2014.912493.

3. Transdisciplinary agricultural research in Lao PDR / G. Greenhalgh, S. А. Kim, S. Larson, et al. // Journal of Rural Studies. 2019. Vol. 72. P. 216–227. doi: 10.1016/j.jrurstud.2019.10.020.

4. Amare D., Darr D. Agroforestry adoption as a systems concept: A review // Forest Policy and Economics. 2020. Vol. 120. Article 102299. URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S1389934120304615?via%3Dihub (дата обращения: 11.04.2025). doi: 10.1016/j.forpol.2020.102299.

5. Физико-химические и технологические показатели молока овец восточно-фризской и романовской пород и их помесей / А. С. Шувариков, С. А. Хататаев, О. Н. Пастух и др. // Овцы, козы, шерстяное дело. 2021. № 1 С. 24–27. doi: 10.26897/2074-0840-2021-1-24-27.

6. Georgieva G., Bancheva T., Stoycheva S. Milk yield and physico-chemical composition of milk of Romanov sheep breed raised in the foot-hill areas of Bulgaria // Scientific Papers-Series D-Animal Science. 2024. Vol. 68. No. 2. P. 221–226.

7. Технология производства сыров на основе овечьего молока / Д. Ж. Ибраев, Г. Н. Жакупова, А. Х. Мулдашева и др. // Механика и технологии. 2021. № 1 (71). С. 43–49. doi: 10.55956/TEMY5202.

8. Haematological and blood biochemical parameters in Lacaune dairy sheep / I. Nedeva, T. Slavov, I. Varlyakov, et al. // Bulgarian Journal of Agricultural Science. 2019. Vol. 25. No. 1. P. 91–95.

9. Haenlein G. F. W. About the evolution of goat and sheep milk production. // Small Rumin. Res. 2007. Vol. 68. P. 3–6. doi: 10.1016/j.smallrumres.2006.09.021.

10. Имашова Д. Г., Алемсетова Г. К. Особенности и резервы развития молочного овцеводства республики Дагестан / Региональные проблемы преобразования экономики. 2025. № 1 (171). С. 130–138.

11. The possibility of genetic evaluation of bovine embryos / A. Khatib, I. Rukin, K. Pantiukh, et al. // Sys Rev Pharm. 2019. Vol. 10. No. 1. P. 156–160.

12. Методы интенсификации воспроизводства в овцеводстве (обзор) / П. И. Христиановский, С. А. Платонов, Е. С. Медетов и др. // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2022. № 3 (95). С. 259–263.

13. Slavova S., Laleva S. Economic values of productive and functional traits in sheep of Bulgarian dairy synthetic population // Agricultural science and technology. 2021. Vol. 13. No. 1. P. 99–104.

14. Technical recommendations for artificial insemination in sheep / A. E. Gibbons, J. Fernandez, M. M. Bruno-Galarraga, et al. // Animal Reproduction. 2019. Vol. 16. No. 4. P. 803–809. doi: 10.21451/1984-3143-AR2018-0129.

15. Inseminate without hormonal treatment in dairy sheep farms: Exploring the consequences on the sustainability of several contrasted production systems / E. Laclef, E. Gonzalez-Garcia, N. Debus, et al. // Animal. 2024. Vol. 18. No. 7. Article 101210. URL: https://www. sciencedirect.com/science/article/pii/S1751731124001411?via%3Dihub (дата обращения: 11.04.2025). doi: 10.1016/j.animal.2024.101210.

16. Spermatozoa cryopreservation: State of art and future in small ruminants / C. Lv, G. Wu, Q. Hong, et al. // Biopreservation and Biobanking. 2019. Vol. 17. P. 171–182. doi: 10.1089/bio.2018.011.

17. Organic breeding in Sarda ewes: Utilization of the ram effect in an artificial insemination program / I. Mayorga, R. Mourad, L. Mara, et al. // Small Ruminant Research. 2019. Vol. 174. P. 131–134. doi: 10.1016/j.smallrumres.2019.03.018.

18. Sexual behaviour in sheep is driven by body condition and the related nutritional and metabolic status / M. Alhamada, N. Debus, E. Gonzalez-Garcia, et al. // Applied Animal Behaviour Science. 2017. Vol. 191. P. 24–30. doi: 10.1016/j.applanim.2017.02.004.

19. High body condition score combined with a reduced lambing to ram introduction interval improves the short-term ovarian response of milking Lacaune ewes to the male effect / N. Debus, E. Laclef, A. Lurette, et al. // Animal. 2022. Vol. 16. No. 5. Article 100519. URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1751731122000702 (дата обращения: 14.04.2025). doi: 10.1016/j.animal.2022.100519.

20. Modelling the long-term consequences of implementing hormone-free reproductive management on the sustainability of a dairy sheep farm / E. Laclef, N. Debus, P. Taillandier, et al. // Computers and Electronics in Agriculture. 2023. Vol. 210. Article 107926. URL: https:// www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0168169923003149 (дата обращения: 14.04.2025). doi: 10.1016/j.compag.2023.107926.

21. Мамонтова Т. В., Айбазов А.-М. М. Сравнительная оценка качественных параметров спермы баранов пород джалгинский и российский мясной мериносы в зависимости от сезона года // Известия ТСХА. 2020. Вып. 4. С. 81–90.

22. Краткосрочное гипотермическое хранение семени баранов-производителей / С. М. Борунова, Б. С. Иолчиев, П. Н. Абрамов и др. // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2023. № 10 (228). С. 60–65. doi: 10.53083/19964277-2023-228-10-60-65.

23. Айбазов М. М., Мамонтова Т. В., Сеитов М. С. Повышение результативности осеменения овец криоконсервированной спермой // Сборник научных трудов всероссийского научно-исследовательского института овцеводства и козоводства. 2017. № 10. С. 28–34.

24. REPROsheep: A model that integrates individual variability to optimise hormone-free reproduction management strategies for a dairy sheep flock / E. Laclef, N. Debus, P. Taillandier, et al. // Computers and Electronics in Agriculture. 2021. Vol. 189. Article 106412. URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0168169921004294 (дата обращения: 14.04.2025). doi: 10.1016/j.compag.2021.106412.

25. Reproductive performance of Lacaune dairy sheep exposed to artificial long days followed by natural photoperiod without and with additional progestagen treatment during the nonbreeding season / A. Fleisch, H. Bollwein, M. Piechotta, et al. // Theriogenology. 2015. Vol. 83. No. 3. P. 320–325. doi: 10.1016/j.theriogenology.2014.06.031.

26. The effect of insemination time and sperm dose on pregnancy rate using sex-sorted ram sperm / K. H. Beilby, C. G. Grupen, P. C. Thomson, et al. // Theriogenology. 2009. Vol. 71. P. 829–835. doi: 10.1016/j.theriogenology.2008.10.005.

27. Small ruminant SexedULTRA™ sperm sex-sorting: Status report and recent developments / C. Gonzalez-Marin, C. Е. Gongora, J. F. Moreno, et al. // Theriogenology. 2021. Vol. 162. P. 67–73. doi: 10.1016/j.theriogenology.2020.12.028.

28. Effects of dietary flaxseed oil and ascorbic acid on the reproductive performance of South African indigenous sheep / J. N. Ngcobo, T. L. Nedambale, K. А. Nephawe, et al. // Ruminants. 2023. Vol. 3. P. 9–24. doi: 10.3390/ruminants3010002.

29. Seasonal variations in semen parameters of Zulu rams preserved at 10 Celsius degrees for 72 h during breeding and non-breeding season / J. N. Ngcobo, K. А. Nephawe, A. Maqhashu, et al. // American Journal of Animal and Veterinary Sciences. 2020. Vol. 15. No. 3. P. 226–239. doi: 10.3844/ajavsp.2020.226.239.

30. Ericsson R. J., Langevin C. N., Nishino M. Isolation of fractions rich in human Y sperm // Nature. 1973. Vol. 246. P. 421–424.

31. Solihati N., Rasad S. D., Hilmia N. The longevity of sexed sperm after sexing with several combination of bovine serum albumin (BSA) concentration // Advances in Biological Sciences Research. 2022. Vol. 20. P. 141–144. doi: 10.2991/absr.k.220309.029.

32. Итоги и перспективы применения вспомогательных репродуктивных технологий в воспроизводстве мелких жвачных / А.-М. М. Айбазов, Т. В. Мамонтова, И. Г. Сердюков и др. // Овцы, козы, шерстяное дело. 2022. № 2. С. 8–14.

33. Carta A., Casu S., Salaris S. Invited review: Current state of genetic improvement in dairy sheep // Journal of Dairy Science. 2009. Vol. 92. No. 12. P. 5814–5833. doi: 10.3168/jds.2009-2479.

34. Martinez-Ros P., Gonzalez-Bulnes A. Efficiency of Cidr-Based Protocols Including Gnrh Inst, ecg for estrus synchronization in sheep // Animals. 2019. Vol. 4. Article 146. URL: https://www.mdpi.com/2076-2615/9/4/146 (дата обращения: 14.04.2025). doi: 10.3390/ani9040146.

35. Seventy years of progestagen treatments for management of the sheep oestrous cycle: Where we are and where we should go / A. Gonzalez-Bulnes, A. Menchaca, G. B. Martin, et al. // Reproduction, Fertility and Development. 2020. Vol. 32. No. 5. P. 441–452. doi: 10.1071/RD18477.

36. Хуснетдинова Н. Ф., Иолчиев Б. С. Синхронизация полового цикла ярок для регуляции окота // Генетика и разведение животных. 2023. № 3. С. 61–66. doi: 10.31043/2410-2733-2023-3-61-66.

37. Vers une maitrise de la reproduction sans hormones chez les petits ruminants / M.-T. Pellicer-Rubio, K. Boissard, J. Grizelj, et al. // INRAE production animals. 2019. Vol. 32. No. 1. P. 51–66. doi: 10.20870/productions-animales.2019.32.1.2436.

38. Скачкова О. А., Бригида А. В. Повышение эффективности метода МОЭТ в программах селекции крупного рогатого скота // Сборник научных трудов Краснодарского научного центра по зоотехнии и ветеринарии. 2021. Т. 10. № 1. С. 129–132.

39. Embryo transfer in sheep (Ovis aries), efficient and consistent framework in superovulation treatment / P. Diaz-Pumara, G. Iorio, D. Blanco, et al. // International Journal of Biosensors & Bioelectronics. 2024. Vol. 9. No. 1. P. 17–22. doi: 10.15406/ijbsbe.2024.09.00238.

40. Viana J. H. M. 2022 Statistics of embryo production and transfer in domestic farm animals // Embryo Technology Newsletter. 2023. Vol. 41. No. 4. P. 1–25. URL: https://www.iets.org/Portals/0/Documents/Public/Committees/DRC/IETS_Data_Retrieval_Report_2022.pdf (дата обращения: 04.10.2025).

41. In vitro embryo production in small ruminants: What is still missing? / J. M. G. Souza-Fabjan, G. R. Leal, C. А. S. Monteiro, et al. // Animal Reproduction. 2023. Vol. 20. No. 3. Article e20230055. URL: https://www.scielo.br/j/ar/a/ND8Twdmmzx7p7x4sN3C95cx/?lang=en (дата обращения: 15.04.2025). doi: 10.1590/1984-3143-AR2023-0055.

42. Pregnancy rate after fixed-time transfer of cryopreserved embryos collected by non-surgical route in Lacaune sheep / L. M. Figueira, N. G. Alves, R. I. T. P. Batista, et al. // Reproduction in Domestic Animals. 2019. Vol. 54. No. 1. P. 1493–1496. doi: 10.1111/rda.13550.

43. Анализ эффективности применения аналогов ГнРГ в протоколе суперовуляции коров-доноров / Д. А. Кнуров, А. В. Бригида, Д. В. Иванова и др. // Ветеринария и кормление. 2022. № 5. С. 21–23. doi: 10.30917/ATT-VK-1814-9588-2022-5-6.

44. Transcervical uterine flushing and embryo transfer in sheep: Morphophysiological basis for approaches currently used, major challenges, potential improvements, and new directions (alas, including some old ideas) / J. D. Goncalves, J. H. Dias, M. MachadoNeves, et al. // Reproductive Biology. 2024. Vol. 24. No. 3. Article 100920. URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/ S1642431X24000664 (дата обращения: 15.04.2025). doi: 10.1016/j.repbio.2024.100920.

45. Preovulatory follicular dynamics, ovulatory response and embryo yield in Lacaune ewes subjected to synchronous estrus induction protocols and non-surgical embryo recovery / L. M. Figueira, N. G. Alves, J. M. G. Souza-Fabjan, et al. // Theriogenology. 2020. Vol. 145. P. 238–246. doi: 10.1016/j.theriogenology.2019.11.004.

46. Combined treatment with oestradiol benzoate, d-cloprostenol and oxytocin permits cervical dilation and nonsurgical embryo recovery in ewes / J. F. Fonseca, F. N. Zambrini, J. D. Guimaraes, et al. // Reproduction in Domestic Animals. 2019. Vol. 54. No. 1. P. 118–125. doi: 10.1111/rda.13318.

47. Bartlewski P. M., Candappa I. B. R. Assessing the usefulness of prostaglandin E2 (Cervidil®) for transcervical artificial insemination (TCAI) in ewes // Theriogenology. 2015. Vol. 84. P. 1594–1602. doi: 10.1016/j.theriogenology.2015.08.007.

48. Cervical penetration rates and efficiency of non-surgical embryo recovery in estrous-synchronized Santa Ines ewes after administration of estradiol ester (benzoate or cypionate) in combination with d-cloprostenol and oxytocin / J. F. Fonseca, F. N. Zambrini, J. D. Guimaraes, et al. // Animal Reproduction Science. 2019. Vol. 203. P. 25–32. doi: 10.1016/j.anireprosci.2019.02.004.

49. A study of the factors affecting embryo yields and quality in superovulated Morada Nova ewes that underwent non-surgical uterine flushing / M. E. F. Oliveira, A. M. Arrais, M. R. Bourg de Mello, et al. // Reproduction in Domestic Animals. 2022. Vol. 57. No. 4. P. 393–401. doi: 10.1111/rda.14077.

50. Non-surgical embryo recovery from estrus-synchronized or superovulated morada nova ewes: A feasible strategy for sheep embryo banking / A. M. Arrais, M. R. Bourg de Mello, G. B. Vergani, et al. // Biopreservation and Biobanking. 2021. Vol. 19. No. 5. URL: https://www. liebertpub.com/doi/10.1089/bio.2020.0125 (дата обращения: 11.04.2025). doi: 10.1089/bio.2020.0125.

51. In vitro embryo production in sheep: Pregnancy after long periods of oocyte and embryo transport / M. C. Max, G. M. G. Santos, F. А. Melo-Sterza, et al. // Small Ruminant Research. 2012. Vol. 105. P. 286–289. doi: 10.1016/j.smallrumres.2012.03.004.

52. Скачкова О. А., Бригида А. В. Выживаемость эмбрионов и повышение темпов генетического прогресса в молочных стадах (обзор) // Сельскохозяйственная биология. 2021. Т. 56. № 6. С. 1063–1078. doi: 10.15389/agrobiology.2021.6.1063rus.

53. In vitro embryo production from ewes at different physiological stages / A. Lorenzo-Torres, R. Rangel-Santos, A. Ruiz-Flores et al. // Journal of veterinary science. 2022. Vol. 23. No. 6. Article e10. URL: https://vetsci.org/DOIx.php?id=10.4142/jvs.22168 (дата обращения: 15.04.2025). doi: 10.4142/jvs.22168.

54. Use of IVF and ET in Mexican Criollo Sheep (Ovis aries): Immediate and Delayed Embryo Transfers / J. Е. H. Pichardo, F. Ortiz, J. L. Rodriguez, et al. // Advances in Reproductive Sciences. 2016. Vol. 4. P. 8–16. doi: 10.4236/arsci.2016.41002.

55. Effect of exogenous glutathione supplementation on the in vitro developmental competence of ovine oocytes / J. Ren, Y. Hao, Z. Liu, et al. // Theriogenology. 2021. Vol. 173. No. 1. P. 144–155. doi: 10.1016/j.theriogenology.2021.07.025.

56. Бригида А. В., Сорокин В. И., Ковальчук С. Н. Оценка применения устройства для аппликации эмбрионов крупного рогатого скота при эмбриотрансфере // Ветеринария и кормление. 2018. № 3. С. 27–29. doi: 10.30917/ATT-VK-1814-9588-2018-3-9.

57. Влияние гормональных схем синхронизации телок-реципиентов на приживляемость заморожено-оттаянных эмбрионов / Д. А. Кнуров, А. В. Бригида, О. А. Скачкова и др. // Ветеринария и кормление. 2022. № 2. С. 30–32. doi: 10.30917/ATTVK-1814-9588-2022-2-8.

58. Use of oxytocin to attain cervical dilation for transcervical embryo transfer in sheep / V. M. B. Santos, P. H. N. Pinto, M. F. A. Balaro, et al. // Reproduction in Domestic Animals. 2020. Vol. 55. P. 1446–1454. doi: 10.1111/rda.13795.

59. Effects of different doses of estradiol benzoate used in a cervical relaxation protocol on the success of non-surgical embryo recovery and luteal function in superovulated ewes / J. H. Dias, J. D. Goncalves, A. M. Arrais, et al. // Domestical Animal Endocrinology. 2023. Vol. Article 106751. URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S073972402200042X?via%3Dihub (дата обращения: 16.04.2025). doi: 10.1016/j.domaniend.2022.106751.

60. Non-surgical embryo recovery and transfer in sheep and goats / J. F. Fonseca, J. M. G. Souza-Fabjan, M. Е. F. Oliveira, et al. // Theriogenology. 2016. Vol. 86. P. 144–151. doi: 10.1016/j.theriogenology.2016.04.025.

61. Бригида А. В., Скачкова О. А. Генетический аспект применения деми-эмбрионов крупного рогатого скота // Ветеринария и кормление. 2020. № 6. С. 4–6. doi: 10.30917/ATT-VK-1814-9588-2020-6-1.

62. Бригида А. В., Скачкова О. А., Ковальчук С. Н. Сравнительная оценка эффективности приживляемости интактных и бисекционных эмбрионов после трансплантации телкам-реципиентам // Ветеринария и кормление. 2020. № 3. С. 4–7. doi: 10.30917/ATT-VK-1814-9588-2020-3-1.

63. Demi-embryo reconstitution, a factor to consider for the success of embryo bisection. Review / A. Lorenzo-Torres, R. Rangel-Santos, A. Ruiz-Flores, et al. // Revista Mexicana de Ciencias Pecuarias. 2022. Vol. 13. No. 2. P. 473–487. doi: 10.22319/rmcp.v13i2.5922.